产品描述
三色预染蛋白分子量标准包含了从10KD到250KD共11种高度纯化并预染的重组蛋白质(10，15，20，25，30，40，50，72，100，130，250KD)，其中72KD条带为橙色，25KD为绿色，其余条带为蓝色，适合作为SDS-PAGE和Western的蛋白质分子量标准。
本彩色预染蛋白质分子量标准已经配制在1×SDS-PAGE上样缓冲液中，直接使用，不要煮沸、稀释，也不需要加入还原剂处理。根据上样孔的大小，彩色预染蛋白质分子量标准通常每次上样5~10μL（5×1.5 mm胶孔5 μL足够），即可在电泳时、电泳后和转膜后观察到非常清楚的蛋白条带。
产品组分
|
产品名称 |
规格 |
|
三色预染蛋白Marker（10-250KD） |
250 μL |
运输与保存
蓝冰运输。4℃短期保存，有效期2个月；-20℃长期保存，有效期36个月。
表观分子量图
本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。
RIPA（强）细胞裂解液（带抑制剂）
蛋白与免疫, 蛋白制备
NP40裂解液（带抑制剂）
蛋白与免疫, 蛋白制备
Q1：李记蛋白marker的推荐上样体积是多少？
A1：0.75mm和1.0mm建议3-5ul，1.5mm建议8-10ul。
Q2：在蛋白marker泳道中看到了一些额外的条带，应该怎么解决？
A2：（1）上样时，请注意确保相邻样品泳道没有交叉污染。蛋白质上样过多,可能会飘散到别的泳道，导致产生额外的条带，这个问题在使用银染凝胶时尤为突出。（2）Marker储存不当或反复冻融会导致蛋白质降解，产生额外条带。李记预染蛋白marker基本没有这种现象。
Q3：为什么预染蛋白marker电泳条带有时上面条带宽下面窄，不是一样的宽窄？
A3：请检查缓冲液的pH和更换pH标准品。
Q4：我可以将你们的预染蛋白marker用于非变性凝胶电泳吗？
A4：不建议将李记的预染蛋白质分子量标准品用于非变性凝胶电泳。因为它们已经变性（在 SDS 样品缓冲液中）和预还原（通过专有方法），预染marker其标示分子量不代表在非变性凝胶电泳中的样品分子量，但是可以作为一个电泳相对标尺。
Q5：在使用蛋白marker时发现条带弥散、模糊，可能是哪些原因？
A5：（1）配试剂尽可能使用超纯水。（2）选用合适浓度的凝胶并确认凝胶在正常有效期内。凝胶放置时间过长会影响分离效果，建议使用新配制的凝胶电泳。特别注意甲叉丙烯酰胺开封后多次称取会很快失效。（3）电压过高或电泳时间过长，产热过多导致电泳缓冲液温度升高。（4）电泳缓冲液陈旧，pH值不在缓冲范围内。尽量使用新鲜的电泳缓冲液，为了获得理想的结果建议在使用前预冷缓冲液。（5）存储或取用不当，引入外源污染，导致蛋白降解。建议使用干净的枪头和EP管分装marker，用干净的枪头、缓冲液和电泳设备进行实验。（6）蛋白marker存储太久并存储不当，或多次冻融取用。
Q6：预染蛋白Marker在电泳后很清晰，但是转膜后颜色变淡，可能是什么原因？
A6：通常情况下，转膜后李记预染marker条带会更鲜亮，如果颜色变淡，可能有几种情况： 【原因1】：转印不完全。①操作不当，比如，转膜没有加冰袋，温度过高；胶和滤纸没夹紧。②转膜条件不适合，转膜时间过长可能透膜，转膜时间过短，蛋白可能残留在胶内。③膜没有充分活化，甲醇浓度太高易造成蛋白穿膜，转移到滤纸上；未活化可能也可能导致膜吸附蛋白能力不强。④膜孔径不适合，建议小分子蛋白使用0.22um膜。 【原因2】：很可能使用了特殊的转膜缓冲液；另外转膜液均不需要加SDS，若实验必须使用，建议SDS浓度不要超过0.02–0.04%。
Q7：蛋白质marker里小分子蛋白质条带穿膜。该如何解决这个问题？
A7：按照标准操作流程，通常都可得到良好结果。如果出现蛋白条带穿膜而过的情况，重点检查以下几个因素： 【因素1】：转印条件，建议适当降低电压、电流或缩短转印时间。 【因素2】：确保转膜缓冲液的甲醇浓度和时长合适，李记低分子量预染蛋白marker不需要加甲醇。转膜前使用浓度为10–20%的甲醇平衡PVDF膜，时间一般不超过30秒。 【因素3】：SDS浓度适当，使用李记生物的小分子量和大分子marker转膜时均不需要SDS，若实验必须使用，建议SDS浓度不要超过0.02–0.04%。过多的SDS会阻碍蛋白质与膜的结合。 【因素4】：检查膜的质量、孔径和靶标蛋白质的大小。如果您的目标蛋白质小于10 kDa，建议使用0.2μm及以下孔径的膜。
三色预染蛋白Marker（10-250KD）
产品价格：268
产品描述
三色预染蛋白分子量标准包含了从10KD到250KD共11种高度纯化并预染的重组蛋白质(10，15，20，25，30，40，50，72，100，130，250KD)，其中72KD条带为橙色，25KD为绿色，其余条带为蓝色，适合作为SDS-PAGE和Western的蛋白质分子量标准。
本彩色预染蛋白质分子量标准已经配制在1×SDS-PAGE上样缓冲液中，直接使用，不要煮沸、稀释，也不需要加入还原剂处理。根据上样孔的大小，彩色预染蛋白质分子量标准通常每次上样5~10μL（5×1.5 mm胶孔5 μL足够），即可在电泳时、电泳后和转膜后观察到非常清楚的蛋白条带。
产品组分
|
产品名称 |
规格 |
|
三色预染蛋白Marker（10-250KD） |
250 μL |
运输与保存
蓝冰运输。4℃短期保存，有效期2个月；-20℃长期保存，有效期36个月。
表观分子量图
本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。
Q1：李记蛋白marker的推荐上样体积是多少？
A1：0.75mm和1.0mm建议3-5ul，1.5mm建议8-10ul。
Q2：在蛋白marker泳道中看到了一些额外的条带，应该怎么解决？
A2：（1）上样时，请注意确保相邻样品泳道没有交叉污染。蛋白质上样过多,可能会飘散到别的泳道，导致产生额外的条带，这个问题在使用银染凝胶时尤为突出。（2）Marker储存不当或反复冻融会导致蛋白质降解，产生额外条带。李记预染蛋白marker基本没有这种现象。
Q3：为什么预染蛋白marker电泳条带有时上面条带宽下面窄，不是一样的宽窄？
A3：请检查缓冲液的pH和更换pH标准品。
Q4：我可以将你们的预染蛋白marker用于非变性凝胶电泳吗？
A4：不建议将李记的预染蛋白质分子量标准品用于非变性凝胶电泳。因为它们已经变性（在 SDS 样品缓冲液中）和预还原（通过专有方法），预染marker其标示分子量不代表在非变性凝胶电泳中的样品分子量，但是可以作为一个电泳相对标尺。
Q5：在使用蛋白marker时发现条带弥散、模糊，可能是哪些原因？
A5：（1）配试剂尽可能使用超纯水。（2）选用合适浓度的凝胶并确认凝胶在正常有效期内。凝胶放置时间过长会影响分离效果，建议使用新配制的凝胶电泳。特别注意甲叉丙烯酰胺开封后多次称取会很快失效。（3）电压过高或电泳时间过长，产热过多导致电泳缓冲液温度升高。（4）电泳缓冲液陈旧，pH值不在缓冲范围内。尽量使用新鲜的电泳缓冲液，为了获得理想的结果建议在使用前预冷缓冲液。（5）存储或取用不当，引入外源污染，导致蛋白降解。建议使用干净的枪头和EP管分装marker，用干净的枪头、缓冲液和电泳设备进行实验。（6）蛋白marker存储太久并存储不当，或多次冻融取用。
Q6：预染蛋白Marker在电泳后很清晰，但是转膜后颜色变淡，可能是什么原因？
A6：通常情况下，转膜后李记预染marker条带会更鲜亮，如果颜色变淡，可能有几种情况： 【原因1】：转印不完全。①操作不当，比如，转膜没有加冰袋，温度过高；胶和滤纸没夹紧。②转膜条件不适合，转膜时间过长可能透膜，转膜时间过短，蛋白可能残留在胶内。③膜没有充分活化，甲醇浓度太高易造成蛋白穿膜，转移到滤纸上；未活化可能也可能导致膜吸附蛋白能力不强。④膜孔径不适合，建议小分子蛋白使用0.22um膜。 【原因2】：很可能使用了特殊的转膜缓冲液；另外转膜液均不需要加SDS，若实验必须使用，建议SDS浓度不要超过0.02–0.04%。
Q7：蛋白质marker里小分子蛋白质条带穿膜。该如何解决这个问题？
A7：按照标准操作流程，通常都可得到良好结果。如果出现蛋白条带穿膜而过的情况，重点检查以下几个因素： 【因素1】：转印条件，建议适当降低电压、电流或缩短转印时间。 【因素2】：确保转膜缓冲液的甲醇浓度和时长合适，李记低分子量预染蛋白marker不需要加甲醇。转膜前使用浓度为10–20%的甲醇平衡PVDF膜，时间一般不超过30秒。 【因素3】：SDS浓度适当，使用李记生物的小分子量和大分子marker转膜时均不需要SDS，若实验必须使用，建议SDS浓度不要超过0.02–0.04%。过多的SDS会阻碍蛋白质与膜的结合。 【因素4】：检查膜的质量、孔径和靶标蛋白质的大小。如果您的目标蛋白质小于10 kDa，建议使用0.2μm及以下孔径的膜。