苏木素染色液-组织染色-和元李记

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苏木素染色液

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AS11L021

100mL

220

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产品描述

苏木素染色液综合了多种经典的方法配制而成。该溶液无汞，可用于免疫组化复染和H＆E染色。

订购信息

产品名称	货号	规格
苏木素染色液	AS11L021	100mL

运输与保存

常温运输。常温避光保存，有效期12个月。

使用方法

1. 试剂准备

酸酒精：在100mL 70%乙醇中加入1mL 盐酸，室温保存。注：冰冻切片后，各种步骤（干燥，乙醇或甲醇固定，热固定，使用带电的或有粘性的盖片）保证组织切片在染色过程中不脱落。

2. 95%乙醇：在HE染色开始前，组织切片需要固定并水化。将切片置于95%乙醇中约2min，开始水化并固定组织。注：跳过使用95%乙醇对组织进行水化和固定，并不影响形态学上的细节。

3. 水化：进一步对组织切片进行水化3-5min，并冲掉前一步残留的乙醇。

4. 苏木素：水化后，组织切片用苏木素染色1-3min，可根据染色结果和要求调整染色时间。苏木素是一种基本染料，可以对细胞的酸性成分进行染色，包括核酸、粘多糖、酸性糖蛋白，将他们染成蓝色或蓝紫色。注：没有苏木素，伊红会将组织染成亮粉红色；显而易见的是缺乏细胞核。组织结构很难区分，细胞内成分几乎都不存在，难以辨别。针对上述问题，可以使用苏木素进行复染。

(1) 染色较弱是由于：自身溶解或者固定不好；过度脱钙；染色时间不足；过度脱色（酸与醇的比例过高或者酸乙醇脱色时间过长）；苏木素的作用较弱（苏木素氧化过度（过老）或水稀释过度）；漂洗溶液的污染；切片过薄；乙醇的去除或者染色前水的漂洗不充分。

(2) 染色过度是由于：组织切片干燥；苏木素浓度过高；染色时间过长；载玻片粘合剂过多；脱色过弱或时间不足；切片过厚；热暴露的时间过长。

5. 水洗：苏木素染色后，用水洗组织是非常重要的。这一步以及随后的水洗，可将多余的染料，媒染剂等去除。适当的漂洗可以去除表面金属光泽，金属光泽可阻止苏木素的染色。注：跳过此步，将产生不好的结果，例如沉淀的形成，染液的稀释，表面金属光泽的存在。

6. 酸酒精：酸酒精分色剂3-5s。在苏木素染色方法中，组织切片有意过度染色，酸酒精将去除多余的染料以及玻片上的背景染色。

注：若省略此步骤，切片将呈暗紫色，嗜酸性结构（如胶原）不会显现出明亮的粉红色，导致组织结构之间难以区分，从而影响对切片的准确判断。另外，分色过度可能是由于：酸浓度过高；脱色时间过长等。分色不足是由于：酸浓度过低；脱色时间不足；在切片上有多余的蛋白或者明胶等。

7. 水洗：水洗30s，终止酸酒精反应，进一步阻止酸酒精从组织切片上将大量苏木素去除。注：如果切片没有经过漂洗，酸酒精可以过度脱色。如果不去除脱色剂，酸酒精将持续从组织切片上去除苏木素。

8. 自来水冲洗或用蓝化液蓝化：自来水冲洗3-5min，可起到发蓝处理，将紫红色的苏木素转变为蓝紫色。通常，发蓝试剂是pH依赖性的，由碱性溶液构成。因此，如果自来水作为发蓝试剂，pH值的每天监控是非常重要的，因为自来水的pH值可能每天都会波动。或用蓝化液蓝化，30s-1min；流动的自来水冲洗5min；注：跳过发蓝试剂步骤，将会导致苏木素染液的颜色发生微妙的变化，难以区分。代替深蓝色，细胞核将呈现紫色，有时甚至是红色。细胞核不可过度蓝染。如果组织染色过蓝，一般是在组织切片上苏木素过多所致。

9. 水洗：为伊红复染做准备，通过水洗30sec，将多余的发蓝试剂去除。因为在碱性环境下，伊红无法染色，水洗去除发蓝试剂将允许伊红保持其酸性pH值，使伊红得以均匀复染。注：发蓝试剂之后，如果没有水洗，组织切片无法正确使用伊红染色。因此，酸性结构将被染为苍白色并且不均匀，进而导致错误的判断。

10. 伊红：为了正确区分胞内结构，伊红是出色的苏木素复染剂。伊红复染30-60s，可根据染色结果和要求调整染色时间。伊红是酸性染料，可染细胞质，尤其是线粒体、分泌颗粒和胶原。它可以区分细胞内不同的细胞器以及不同的结缔组织。注：使用伊红复染组织切片的失败，将导致组织切片的低分化。

(1) 染色较弱是由于：组织切片过薄；染色时间不足；随后95%酒精分化过度。

(2) 染色过度是由于：染液浓度较高（可能是由于过度蒸发）；组织切片过厚；染色时间过长；随后95%酒精分化不足。

(3) 伊红染色未分化（一种颜色）是由于：固定不彻底；过度染色（染色时间过长或染液浓度过高）。

11. 95%乙醇：95%乙醇处理2s-1min，根据染色结果和要求调整；伊红分化将产生不同的粉色。注：如果95%乙醇被稀释（例如，从前一步染色中携带了伊红），分化的效果较差。

12. 100%乙醇：通过100%乙醇使组织切片脱色。100%乙醇处理1min；再用新的100%乙醇处理1min。注：这一步很难引起注意，若无95%乙醇，难以区分酸性结构，组织切片成为粉色。若无100%乙醇脱水，组织切片不能完全脱水，导致在盖片下形成水珠。这些水珠可与下一步的二甲苯结合而形成白色混浊物，这将影响组织切片的质量。

13. 二甲苯：二甲苯处理5min。在充分脱水后，二甲苯可将组织切片上的酒精去除。去除酒精后，在载玻片上加盖玻片时，二甲苯也可作为包埋剂确保可溶解。由于有潜在的毒性，二甲苯替代品，例如柠檬烯、环烷烃也可使用。替代品可提供相同的组织染色质量，并且他们使用更安全，操作更简单。注：当跳过此步骤时，不使用二甲苯透明，酒精将会保存于组织切片上，导致伊红从切片上流出。

14. 封片：中性树胶封片，自然风干或烤干，显微镜观察。

染色结果：细胞核染为蓝色；细胞质染为红色。

注意事项

1．本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。

2．为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

3．试剂应保存于阴凉、干燥、通风良好的环境中。

4．本产品可与伊红染色液（货号：AS11L031）配合使用。

5．第一次使用本产品时建议先取1-2个样品做预实验。