Anti-Flag免疫磁珠-免疫磁珠-和元李记

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Anti-Flag免疫磁珠

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产品货号

产品规格

原价

AP62L172

1mL

1600

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产品说明产品FAQ COA 产品文献 MSDS

产品描述

Anti-Flag磁珠为直径200nm的纳米磁珠，也被称为Anti-DYKDDDDK Magnetic Beads，表面共价结合了高质量的鼠源抗Flag单克隆抗体。纳米级磁珠由于高的表面积与体积比，会提供更多结合位点，磁珠使用量更少，非特异性吸附率低。本产品广泛应用于细胞裂解液、细胞培养上清、血清、腹水等样品中的抗原免疫沉淀（IP）或免疫共沉淀（Co-IP）。

订购信息

产品名称	货号	规格
Anti-Flag免疫磁珠	AP62L172	1 mL

运输与保存

蓝冰运输。4℃保存，有效期24个月。注：避免冻融或离心磁珠。

技术参数

基质	硅基磁珠
配体	鼠源抗DYKDDDDK单克隆抗体
粒径	200 nm
磁珠浓度	10 mg/mL
结能合力	≥0. 6 mg Anti-Flag标签蛋白/mL磁珠
适用范围	IP，Co-IP等

使用方法

（一）样本制备

对于贴壁细胞样品：

1. 移除培养基，用PBS洗涤细胞两次。

2. 收集细胞至1.5 mL EP管内，按比例加入IP Lysis/Wash Buffer，同时加入PMSF等相应的抑制剂，混匀后置于冰上静置5-20min，期间需多次轻轻翻转混合以促进细胞裂解。

3. 在4°C条件下，12000-16000g，10 min离心收集上清液，置于冰上以备后续实验，或存放于-80°C长期保存。

表1.培养皿IP Lysis/Wash Buffer推荐使用体积

培养皿大小/表面积	IP Lysis/Wash Buffer体积
100 mm	500-1000 µL
60 mm	100-300 µL
6孔板	100-200 µL

对于悬浮细胞样品：

1. 在4°C条件下，500-1000g，10min，收集细胞，弃上清。

2. PBS重悬细胞，4℃，500-1000g，10 min，收集细胞，弃上清。

3. 用预冷的IP Lysis/Wash Buffer重悬细胞。每50 mg细胞使用500μL IP Lysis/Wash Buffer。同时加入PMSF等相应的抑制剂，混匀后置于冰上静置5-20 min，期间需多次轻轻翻转混合以促进细胞裂解。

4. 在4°C条件下，12000 -16000g，10 min离心收集上清液，置于冰上以备后续实验，或存放-80℃长期保存。

对于血清样品：

通常建议使用IP Lysis/Wash Buffer将血清样品稀释至目标蛋白的最终浓度介于50至150 µg/mL。稀释后的样品可置于冰上以备用，或存放于-20℃以便长期保存。

（二）免疫沉淀

注：为保证磁珠均匀分布，使用前通过反复颠倒或轻微涡旋混匀瓶中磁珠。

1. 将25-50µL Anti-Flag磁珠加入1.5 mL离心管中。

2. 向磁珠中加入500 µL预冷PBS，轻柔混匀，使用磁力架分离磁珠，弃去上清。

3. 向离心管中加入00-500 µL IP Lysis/Wash Buffer，颠倒离心管数次或轻微涡旋混匀1min。用磁力架分离磁珠，弃去上清。

4. 将抗原样品/抗体免疫复合物加入装有磁珠的离心管中，混匀仪上室温孵育1-2 h，或 4℃，2-4 h。

5. 用磁力架分离磁珠，除去未结合的样品，并保存以备分析。

6. 向离心管中加入1000 µL IP Lysis/Wash Buffer，轻柔混匀5-10min，收集磁珠，弃上清。再重复洗两次。

7. 变性洗脱：向离心管中加入80-100 µL SDS-PAGE蛋白上样缓冲液（1×），将样品置于100℃水浴或者金属浴中加热10 min。通过磁力架分离磁珠，收集含有目的抗原的上清进行后续实验。注：当使用的一抗检测分子量在50或25kDa范围内的蛋白质时，建议使用构象特异性二抗进行检测，以尽量减少抗体重链或轻链的干扰；如需保持蛋白活性，也可采用以下洗脱方式：

低pH洗脱：此方法为非变性洗脱法，洗脱的样品保持原有的生物活性，可用于后期功能分析。向离心管中加入100 µL 洗脱液（0.1M 甘氨酸，pH2.5），混匀在室温下孵育离心管5-10 min。接着置于磁力架上静置约30s，待磁吸完全后，收集上清至新的Ep管，并立即加入20 μL的中和缓冲液（1M Tris-HCl，pH8.0），将洗脱产物pH调节至中性，样品用于后期功能分析。

注意事项

1. 本产品仅限于科学实验研究使用，不得用于临床诊断、治疗等领域。

2. 请勿高速离心、干燥或冷冻磁珠，这些操作会导致磁珠聚集而降低结合能力。

3. 在免疫共沉淀（IP）实验中，不同类型的抗体与其对应抗原之间的亲和力可能有所不同，并且这种结合效率还可能受到IP Lysis/Wash Buffer的影响。若当前实验步骤未能获得理想结果，建议调整操作细节或自行筛选及配制适合的缓冲液，也可使用李记生物相关试剂，详见底部。